1樓：匿名使用者
這個沒有絕bai
對的。取決於你的試du驗方法和zhi目的。一般來說，固dao定後，把樣本再轉移回到儲存液中，可以大答大延長儲存的時間。
為了保護抗原表位，建議你使用新鮮配置的多聚甲醛來固定。固定後立刻轉移到5%bsa的pbs溶液中（最好放防腐劑），可以在4度儲存一段時間。
當然，樣本長時間儲存，肯定對結果會有不好影響。至於影響的大小，你要做乙個時間曲線來證明。以後就心中有數了。
還有一點要注意的是，抗體對抗原表位的識別。有些抗體只能識別未固定的表位，有些可以識別固定後的，有些只能識別變性的肽鏈。購買的時候也要特別注意。
2樓：111尚屬首次
應該是不行的，流式一般是先抗體標記，再固定的。先用甲醛固定會影響蛋白構形，內改變抗原決定簇的三
容維構型，影響蛋白與抗體的結合，造成假陰性結果。
最好不要這樣，我們實驗室做流式沒有提前用甲醛固定過，都是收集細胞後馬上做流式。細胞如果長密了你可以凍存或者傳代，等抗體來了再做流式。
3樓：蛙家居
這個沒有絕對的.取決於你的試驗方法和目的.一般來說,固定後,把樣本再轉移到儲存專液中,可以屬大大延長儲存的時間.
為了保護抗原表位,建議你使用新鮮配置的多聚甲醛來固定.固定後立刻轉移到5%bsa的pbs溶液中（最好放防腐劑）,可以在4度儲存一段時間.
當然,樣本長時間儲存,肯定對結果會有不好影響.至於影響的大小,你要做乙個時間曲線來證明.以後就心中有數了.
細胞固定不好以及免疫螢光背景強怎麼辦
4樓：匿名使用者
補充：一抗用的abcam的，1:200稀釋；
二抗用的國產的中杉金橋的，1:50稀釋的。
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